Inżynieria genetyczna
Informacje ogólne
Kod przedmiotu: | 6.15.BTM-IG |
Kod Erasmus / ISCED: |
13.1
|
Nazwa przedmiotu: | Inżynieria genetyczna |
Jednostka: | Instytut Inżynierii Środowiska i Biotechnologii |
Grupy: | |
Punkty ECTS i inne: |
5.00
|
Język prowadzenia: | polski |
Skrócony opis: |
C1 Poszerzenie wiedzy dotyczącej mechanizmu działania enzymów używanych w biologii molekularnej. C2 Zapoznanie studentów z budową wektorów do klonowania i ekspresyjnych oraz rolą biochemiczną ich części składowych. C3 Zapoznanie z rekombinowanymi szczepami bakteryjnymi zaprojektowanymi dla celów ekspresji białek terapeutycznych. Poznanie transgenicznych zwierząt i roślin i ich zastosowania w medycynie C4 Rozumienie procesów regulacyjnych związanych z ekspresją genów. C5 Zapoznanie się z podstawowymi metodami mikroanalizy białek. Przybliżenie zastosowania mutagenezy ukierunkowanej C6 Zapoznanie studentów z metodyką izolacji i analizy materiału genetycznego pochodzenia bakteryjnego i roślinnego; metodami transformacji bakterii plazmidowym DNA, a także metodami oczyszczania białek rekombinowanych z bakterii |
Pełny opis: |
Forma zajęć wykład W01 Charakterystyka enzymów używanych w inżynierii genetycznej. Enzymy restrykcyjne. W02 Mikromacierze DNA. Uszkodzenie (nokautowanie) genu. Interferencja RNA. W03 Schemat klonowania i izolacja rekombinowanego klonu. Podstawowe wektory klonujące, pBR322, fag λ , fag M13. W04 Transgeniczne zwierzęta i rośliny (metody modyfikacji genetycznej w celu pozyskania terapeutyków) W05 Budowa, konstrukcja i izolacja rekombinowanych wektorów. W06 Wektory ekspresyjne, budowa i regulacja ekspresji genu. W07 Mutageneza ukierunkowana. W08 Detekcja i analiza sklonowanych genów i ich produktów, hybrydyzacja kwasów nukleinowych (Nothern, Southern blotting), immunodetekcja białek (Westen blotting), elektroforeza w żelach, spektrometria mas. Zielone białko fluoryzujące jako znacznik ekspresji genu. Forma zajęć laboratorium L01 Izolacja plazmidowego i genomowego DNA z komórek bakteryjnych i roślinnych. L02 Trawienie plazmidowego DNA enzymami restrykcyjnymi i analiza DNA w żelu agarozowym. L03 Transformacja bakterii plazmidowym DNA. Indukcja ekspresji genów w bakteriach rekombinowanych. Izolacja produktu ekspresji genu. Oczyszczanie białka rekombinowanego metodą chromatografii powinowactwa. Analiza poszczególnych etapów uzyskiwania białka rekombinowanego poprzez rozdział w żelu poliakrylamidowym. |
Literatura: |
podstawowa 1 Berg M.J., Tymoczko J.L., Stryer L. Biochemia, PWN, Warszawa 2013 2 Buchowicz J. Biotechnologia molekularna, PWN, 2009 3 Bates AD., McLennan AG., Turner PC., White MRH., Biologia Molekularna, Krótkie wykłady, PWN, 2016 4 Nowak Z., Gruszczyńska J., Wybrane techniki i metody analizy DNA, SGGW, 2007 5 Turner P.C., McLennan A.G., Bates A.D., Biologia molekularna. Krótkie wykłady, M.R.H. White; PWN 2007 6 Baj J., Markiewicz Z., Biologia molekularna bakterii, PWN 2006 1 Sambrook J., Russel D.; Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Third Edition, Cold Spring Harbor Laboratory 2001 2 Rastogi S., Pathlak N.: Genetic engineering, Oxford University Press 2011 3 Howe C.: Gene cloning and manipulation, Cambridge University Press 2007 4 Publikacje polecane przez wykładowcę, pochodzące z Postępów Biochemii, Postępów Biologii Komórki, Postępów Mikrobiologii, Kosmosu |
Efekty uczenia się: |
Nr efektu Efekty kształcenia Wiedza EKW1 Student omawia enzymy stosowane w inżynierii genetycznej, w szczególności enzymy restrykcyjne EKW2 Student wie, co to są mikromacierze DNA i jakie mają zastosowanie medyczne. Definiuje pojęcia: interferencja RNA, nokautowanie genu. EKW3 Student wymienia etapy klonowania i metody identyfikacji klonów rekombinantów. Omawia podstawowe wektory do klonowania: pBR322, fag λ , fag M13 EKW4 Student podaje przykłady transgenicznych zwierząt i roślin i ich zastosowanie w produkcji leków EKW5 Student omawia budowę i metody izolacji rekombinowanych wektorów EKW6 Student zna budowę wektorów ekspresyjnych i mechanizmy regulacji ekspresji genów EKW7 Student omawia mutagenezę ukierunkowaną EKW8 Student wymienia i charakteryzuje metody detekcji i analizy sklonowanych genów i ich produktów Umiejętności EKU1 Student potrafi wyizolować plazmidowe i genomowe DNA z komórek prokariotycznych i eukariotycznych, wykonać trawienie restrykcyjne oraz elektroforezę w żelu agarozowym EKU2 Student potrafi ukompetentnić komórki bakteryjne, przeprowadzić transformację komórek plazmidowym DNA oraz wyizolować klony rekombinantów EKU3 Student potrafi wyizolować i oczyścić białko rekombinowane metodą chromatografii powinowactwa oraz monitorować poszczególne etapy uzyskiwania białka metodą SDS-PAGE EKU4 Student potrafi zaplanować eksperyment wymiany kluczowego aminokwasu we wskazanym białku używając metod biologii molekularnej Kompetencje społeczne (postawy) EKK1 potrafi współpracować w grupie |
Metody i kryteria oceniania: |
wykład Egzamin pisemny do zdania egzaminu konieczne jest udzielenie poprawnych odpowiedzi na co najmniej 50% zagadnień poruszonych w pytaniach laboratorium Zaliczenie z oceną ustalenie oceny końcowej na podstawie ocen cząstkowych ze sprawdzianów ze znajomości podstaw teoretycznych dotyczących doświadczeń (70%), poprawności wykonania doświadczeń oraz aktywności na zajęciach (30%) |
Zajęcia w cyklu "Semestr letni 2023/2024" (zakończony)
Okres: | 2024-03-01 - 2024-09-30 |
Przejdź do planu
PN WT WYK
ŚR CZ PT LAB
LAB
|
Typ zajęć: |
Laboratorium, 30 godzin
Wykład, 30 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Tadeusz Janas, Teresa Janas | |
Prowadzący grup: | Teresa Janas, Karolina Sapoń | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: |
Przedmiot -
Egzamin
Laboratorium - Zaliczenie na ocenę Wykład - Egzamin |
Zajęcia w cyklu "Semestr letni 2024/2025" (jeszcze nie rozpoczęty)
Okres: | 2025-03-01 - 2025-09-30 |
Przejdź do planu
PN WT ŚR CZ PT |
Typ zajęć: |
Laboratorium, 30 godzin
Wykład, 30 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Tadeusz Janas | |
Prowadzący grup: | Teresa Janas, Karolina Sapoń | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: |
Przedmiot -
Egzamin
Laboratorium - Zaliczenie na ocenę Wykład - Egzamin |
Właścicielem praw autorskich jest Uniwersytet Opolski.