Biologia molekularna
Informacje ogólne
Kod przedmiotu: | 11.LEK.D6.1.BM |
Kod Erasmus / ISCED: | (brak danych) / (brak danych) |
Nazwa przedmiotu: | Biologia molekularna |
Jednostka: | Instytut Nauk Medycznych |
Grupy: |
Kierunek lekarski, studia stacjonarne D6 |
Punkty ECTS i inne: |
3.00
|
Język prowadzenia: | polski |
Poziom studiów: | jednolite magisterskie |
Kierunek studiów: | lekarski |
Semestr, w którym realizowany jest przedmiot: | 1 |
Rodzaj przedmiotu: | obowiązkowe |
Tryb prowadzenia: | Realizowany zdalnie |
Wymagania: | znajomość biologii na poziomie matury rozszerzonej z tego przedmiotu. |
Literatura uzupełniająca: | 1. Gruber B.M. Epigenetyka a etiologia chorób neurodegeneracyjnych. 2011 Postepy Hig Med Dosw (online), 65: 542-551. https://phmd.pl/resources/html/article/details?id=51990&language=pl 2.Sawicki w., Malejczyk J., Wróblewska M. 2015 Starzenie: mecha-nizmy epigenetyczne i genetyczne. Gerontologia Polska 2: 47-52 http://gerontologia.org.pl/wp-content/uploads/2016/07/2015-2_Gerontologia_4.pdf 3.Siedlecki J. 2011 Diagnostyka molekularna nowotworów. Postępy Nauk Medycznych 2: 88-93. http://www.czytelniamedyczna.pl/3594,diagnostyka-molekularna-nowotworlw.html 4. Siedlecki J. Diagnostyka molekularna. 2009 W: Mięsaki tkanek miękkich u dorosłych. red. P. Rutkowski i Z. I. Nowecki, Medical Tribune Polska, Warszawa, http://www.sarcoma.pl/pliki/Monografia/rozdzial5.pdf 5. Szustka A., Rogalińska M. 2017 Potencjalne zastosowania komórek macierzystych w medycynie regeneracyjnej i transplantologii Postępy Biochemii 63: 143-150 https://postepybiochemii.ptbioch.edu.pl/index.php/PB/article/view/65/80 6. Inżynieria genetyczna i terapia genowa (red. I. Bednarek) Śląski Uniwersytet Medyczny, Katowice 2008 https://dysk.sum.edu.pl/s/CkgRoG4zsFTjQWJ |
Nakład pracy studenta: | Bieżące przygotowanie do zajęć 15 godz. Przygotowanie do zaliczenia przedmiotu 40 godz. Razem 55 godz |
Założenia: | Zaznajomienie z: 1. metodami: badania genomów, analizy kwasów nukleinowych, badania ekspresji i funkcji genów, mutagenezy in vivo; 2. metodami inżynierii genetycznej i zastosowaniem GMO jako bioreaktorów do produkcji leków i szczepionek; 3. terapią genową chorób metabolicznych i nowotworów; 4. metodami otrzymywania i zastosowanie indukowanych pluripotentnych komórek macierzystych; 5. metodami diagnostyki molekularnej; 6. mechanizmami zmian epigenetycznych i chorobami spowodowanymi zaburzeniami regulacji epigenetycznej; 7. starzeniem komórek i typami śmierci komórkowej; 8. podłożem molekularnym chorób nowotworowych. Zajęcia pozwalają też na poznanie roli osobniczej zmienności genomu w personalizacji terapii farmakologicznej i diety oraz identyfikacji osób i ustalaniu ich pokrewieństwa. |
Skrócony opis: |
Kurs jest poświęcony głównie metodom biologii molekularnej umożliwiającym: badanie: podatności i nosicielstwa chorób genetycznych i tym raka, identyfikację osób, personalizację terapii farmakologicznej i dietetycznej, diagnostyki chorób infekcyjnych. Ponadto omówione zostaną: różnice w biologii molekularnej organizmów pro- i eukariotycznych umożliwiające celowane terapie chorób infekcyjnych, molekularne podłoże starzenia i chorób nowotworowych, metody inżynierii genetycznej jako punkt wyjścia do produkcji białek terapeutycznych i szczepionek, możliwości otrzymywania i terapeutycznego wykorzystania komórek macierzystych. |
Pełny opis: |
W1. Porównanie DNA i RNA. Porównanie replikacji, transkrypcji, dojrzewania transkryptów, translacji i ich regulacji u Pro- i Eukariota i wynikającej z tego selektywności antybiotyków. W2. Genom człowieka. Metody badania genomów: izolacja i oczyszczanie kwasów nukleinowych, fragmentowanie DNA, frakcjonowanie kwasów nukleinowych, amplifikacja DNA met. PCR, sekwencjonowania DNA, hybrydyzacja kwasów nukleinowych. W3. Inżynieria genetyczna: metody klonowania fragmentów DNA i two-rzenia genetycznie modyfikowanych organizmów (GMO). Transgenizacja zwierząt – iniekcja/infekcja obcego DNA do zapłodnionych oocytów, iniekcja genetycznie zmodyfikowanych zarodkowych komórek macierzys-tych do blastocysty. Mutageneza in vivo – gene targeting, genetyczny nokaut. Technologia antysensowna. Redagowanie genomu. Tworzenie GMO roślinnych. GMO jako bioreaktory do produkcji leków i szczepionek. Terapia genowa chorób metabolicznych i nowotworów. W4. Otrzymywanie i zastosowanie indukowanych pluripotentnych komórek macierzystych. Diagnostyka molekularna – analiza mutacji, testy diagnostyczne chorób infekcyjnych i inwazyjnych. Nieinwazyjna diagnostyka prenatalna. Epigenetyka: mechanizmy zmian epigenetycznych – metylacja DNA, modyfikacje histonów. W5. Epigenetyka: mechanizmy zmian epigenetycznych cd - struktura chromatyny, niekodujący RNA, piętnowanie rodzicielskie, choroby spowodowane zaburzeniami regulacji epigenetycznej. Farmakogenetyka. Nutrigenetyka. Profilowanie/analiza DNA w medycynie sądowej: ustalanie ojcostwa, identyfikacja ofiar katastrof masowych, identyfikacja ofiar i sprawców w sprawach kryminalnych. Markery genetyczne bi- i wieloalleliczne autosomalne, położone na chromosomach płci i w DNA mitochondrialnym. W6. Struktura komórki, podziały komórkowe i ich zaburzenia. Starzenie komórek. Typy śmierci komórkowej. Podłoże molekularne chorób nowotworowych – mutacje protoonkogenów, genów supresorowych, kontrolujących apoptozę i naprawę uszkodzonego DNA, niestabilność genomowa. Markery nowotworowe i sposoby ich badania. Zmiany epigenetyczne w nowotworzeniu. C1. Zapoznanie ze specyfiką pracy w laboratorium biologii molekularnej. Izolacja DNA genomowego z wymazu z jamy ustnej. Zagadnienia teoretyczne dla studenta: - Budowa DNA, poziomy organizacji chromatyny, replikacja, podziały komórkowe Część praktyczna: - izolacja DNA z komórek nabłonka jamy ustnej, - ocena czystości i pomiar stężenia DNA metodą spektrofotometryczną C2. Izolacja RNA z komórek bakteryjnych. Elektroforeza kwasów nukleinowych Zagadnienia teoretyczne dla studenta: - budowa i rodzaje RNA, transkrypcja i obróbka potranskrypcyjna Część praktyczna: - izolacja RNA z E. coli metodą kolumienkową, - elektroforeza wyizolowanego DNA genomowego i RNA C3. Izolacja plazmidowego DNA z bakterii Zagadnienia teoretyczne dla studenta: - budowa, klasyfikacja, występowanie i zastosowanie plazmidów bakteryjnych, Część praktyczna: - izolacja plazmidowego DNA metodą lizy alkalicznej C4. Analiza restrykcyjna plazmidowego DNA Zagadnienia teoretyczne dla studenta: - enzymy restrykcyjne i ich zastosowanie w biologii molekularnej Część praktyczna: - trawienie plazmidu enzymem restrykcyjnym, - elektroforeza plazmidu trawionego i nietrawionego C5.Struktura genu pro- i eukariotycznego. Kolokwium zaliczeniowe. Zagadnienia teoretyczne dla studenta: - budowa genów prokariotycznych i eukariotycznych, - mechanizm ekspresji genów Część praktyczna: - analiza sekwencji genów z użyciem narzędzi bioinformatycznych - kolokwium zaliczeniowe |
Literatura: |
1. Brown T.A. Genomy. Wyd. Naukowe PWN, 2009 i następne. 2. Turner P., McLennan A., Bates A., White M. Biologia molekularna – krótkie wykłady. PWN, Warszawa 2011 3. Genetyka medyczna i molekularna (J. Bal, red), PWN, Warszawa 2017 i następne 4. Allison L.A. Podstawy biologii molekularnej. Wyd. Uniw. Warszawskiego, Warszawa, 2009 i następne |
Efekty uczenia się: |
Student: EK-1 umie wyizolować DNA i RNA, przeprowadzić analizę restrykcyjną DNA i elektroforetyczną kwasów nukleinowych EK-2 umie zanalizować sekwencję nukleotydową DNA pod kątem zakodowanych w niej genów białek i elementów regulatorowych genu, potrafi przeprowadzić prostą bioinformatyczną analizę sekwencji DNA korzystając z baz danych i dostępnych on-line narzędzi analizy EK-3 ma wiedzę o strukturze genomów, transkryptomów i proteomów, roli i regulacji DNA, RNA i białek EK-4 zna podstawowe metody: analizy kwasów nukleinowych, tworzenia GMO, diagnostyki molekularnej EK-5 zna możliwości terapii genowej i terapii z udziałem indukowanych komórek pluripotencjalnych, a także roli osobniczej zmienności genomu w personalizacji terapii farmakologicznej i diety |
Metody i kryteria oceniania: |
Weryfikacja efektów uczenia: ćwiczeń – na podstawie czterech pisemnych kolokwiów wstępnych przeprowadzanych na początku każdego ćwiczenia i kolokwium końcowego na zakończenie ćwiczenia 5 (każde z 1-krotną możliwością poprawy), wykładów – na podstawie pisemnego zaliczenia na ocenę. |
Zajęcia w cyklu "Semestr zimowy 2024/2025" (zakończony)
Okres: | 2024-10-01 - 2025-02-28 |
Przejdź do planu
PN WT ŚR CZ PT |
Typ zajęć: |
Ćwiczenia Laboratoryjne, 15 godzin
Wykład, 18 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Anna Goc | |
Prowadzący grup: | Ewa Boniewska-Bernacka, Anna Goc, Anna Pańczyszyn | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: |
Przedmiot -
Zaliczenie na ocenę
Ćwiczenia Laboratoryjne - Zaliczenie Wykład - Zaliczenie na ocenę |
Właścicielem praw autorskich jest Uniwersytet Opolski.